AAV病毒在胰腺组织研究中的靶向策略
胰(Pancreas)是人体的第二大消化腺,横跨在第1、2腰椎的前面,质地柔软,呈灰红色,可分为头、体、尾三部。胰腺是人体最重要的器官之一,因为它兼有内、外分泌的功能。外分泌部的腺细胞分泌胰液,经各级导管,流入胰腺管,胰腺管与胆总管共同开口于十二指肠。内分泌部是指散在于外分泌部之间的细胞团——胰岛,它分泌的激素直接进入血液和淋巴,主要参与糖代谢的调节。
图1. 胰腺外观图
胰腺表面覆以薄层结缔组织被膜,结缔组织伸入腺内将实质分隔为许多小叶,但人胰腺小叶分界不明显。腺实质由外分泌部和内分泌部两部分组成。外分泌部为浆液性复管泡状腺。小叶间结缔组织中有导管、血管、淋巴管和神经。胰岛(pancreas islet)是由内分泌细胞组成的细胞团,分布于腺泡之间。人胰岛主要有A(约20%)、B(约70%)、D(约50%)、PP(较少)四种细胞,某些动物的胰岛内还有D1细胞、C细胞等,细胞之间有紧密连接和缝隙连接。
图2. 胰腺解剖横断面模型
腺相关病毒(Adeno-associated Virus,AAV)属于细小病毒科(parvoviridae),病毒颗粒无包膜,结构为直径约20nm的正二十面体,是迄今发现的一类结构最简单且无法自主复制的线性单链DNA病毒,对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染力。重组腺相关病毒(Recombination adeno-associated virus,rAAV)载体是在非致病的野生型AAV的基础上改造的基因表达载体,具有种类多样、免疫原性低、安全性高、宿主范围广、扩散能力强、体内表达外源基因时间长等特点,已被广泛的应用在动物水平的基因表达、基因操作和基因治疗。
1.血清型的选择
图3. 逆行胰管给药的AAV载体对胰岛和β细胞的转导[1]
Quirin K A等人[2]通过静脉给药对比了scAAV9和scAAV8对于胰腺的侵染能力,发现scAAV9>scAAV8,在病毒注射量为1E+12 vg时,scAAV9能够侵染45%的胰腺细胞(图4)。随后他们通过逆行胰管给药,对比了scAAV6,scAAV8和scAAV9对于胰腺的侵染能力。结果表明这种给药方式下,scAAV6对于胰腺的侵染能力最高,能够侵染80%的胰腺细胞,可以有效转染胰腺的腺泡细胞、上皮细胞和间质细胞(图5)。
图4. AAV8和AAV9通过全身递送靶向胰腺的比较[2]
图5. 逆行胰管给药不同血清型对胰腺的侵染情况[2]
常规血清型想要对胰腺有较好的侵染效果,通常要使用逆行胰管给药(图6A),这种给药方式创伤较大,难度较高。Chen M等人[3]使用衣壳优化的AAV8载体,采用尾静脉和腹腔注射的方式研究AAV在胰腺和胰腺肿瘤中的表达。研究人员生成了三种不同的酪氨酸-苯丙氨酸(Y-to-F)突变AAV8载体,并将它们的转导效率与野生型AAV8在小鼠模型中的正常胰腺和胰腺导管腺癌(PDAC)进行了比较。他们发现,双突变AAV8(Y447F+Y733F)在胰腺组织中表现出最高的转导效率,与野生型AAV8的7%相比,双突变AAV8(Y447F+Y733F)的mCherry表达达到45-70%。与野生型相比,该双突变体在正常胰腺中的载体基因拷贝数也高出7倍,在PDAC中的转导效率高出15倍。双突变AAV8(Y447F+Y733F)通过腹腔注射可以显著增强在胰腺中的基因表达,相比于尾静脉注射,腹腔注射可以使mCherry表达效率提高4.28-9.6倍。
图6. Y447F+Y733F-AAV8双突变体提高小鼠胰腺的转导效率[3]
2.特异性启动子
为了实现目的基因在胰腺中特异性性表达,除了选择感染胰腺效果较好的血清型,配合使用胰腺特异性表达启动子也是非常重要的一步,特异性启动子可以避免目的基因在非靶细胞中大量表达。
下面我们就看一下胰腺常用的特异性启动子有哪些。
Guo P等人[4]的研究使用α细胞特异性的glucagon (GCG)启动子来驱动Pdx1和MafA转录因子在胰腺α细胞中的表达。AAV8-GCG-Pdx1-MafA载体能够特异性地靶向并转导胰腺α细胞,导致这些细胞中Pdx1和MafA的表达。在胰腺导管注射AAV8-GCG-PM病毒10天后,观察到超过96%的胰腺α细胞表达GFP。
表1. glucagon (GCG)启动子应用信息[4]
血清型 |
启动子 |
注射方式和注射量 |
感染效果 |
AAV8 |
GCG |
胰腺导管注射(4E+11 vg) |
在胰腺导管注射AAV8-GCG-PM病毒10天后,观察到超过96%的胰腺α细胞表达GFP |
Ins1,RIP胰岛β细胞特异性启动子
Ramzy A等人[5]使用AAV8-Ins1-Cre提供了一种有效的替代性转基因Cre驱动小鼠系统,避免了发育缺陷、β细胞功能受损和高成本等问题。研究人员对腹腔注射AAV8 Ins1-Cre小鼠的胰腺进行免疫染色,检测胰岛素和绿色荧光蛋白。3E+12 vg组3/3小鼠和1E+12 vg组2/3小鼠的β细胞重组率较高(81-93%)(图7)。
图7. 腹腔注射不同量的AAV对胰岛β细胞的侵染效率[5]
在Wang J [6]等人研究中,研究人员通过腺相关病毒载体(AAV8-RIP2-Nr3c1-3×Flag)将NR3C1基因导入小鼠胰腺,从而利用RIP2启动子在β细胞中特异性过表达NR3C1。这种β细胞特异性的NR3C1过表达小鼠模型可用于研究NR3C1在糖尿病发病机制中的作用。
Xiangwei Xiao等人[7]的研究表明携带Sox9启动子的AAV可以特异性地感染胰腺导管细胞。研究中使用携带Sox9启动子驱动的Cre重组酶的AAV6载体可以特异性地标记胰腺导管细胞。使用携带Sox9启动子驱动的VEGF shRNA的AAV6载体可以特异性地敲低胰腺导管细胞中VEGF的表达。总之,Sox9启动子可以用于靶向胰腺导管细胞,实现对该细胞群的基因操作和标记。
表2. Sox9启动子应用信息[7]
血清型 |
启动子 |
注射方式和注射量 |
感染效果 |
AAV8 |
Sox9 |
胰腺导管注射(2E+11 vg) |
携带Sox9启动子的AAV可以特异性地感染胰腺导管细胞 |
3.注射方式
相比于肾脏多种给药方式,胰脏的给药方式主要就3种:尾静脉给药、腹部给药和胰腺导管给药。下面我们就以表格的方式,对比一下3种给药方式(表3)。在侵染效率上,胰腺导管给药>腹部给药>尾静脉给药。前期的应用中研究人员多数选择了胰腺导管给药,但是胰腺导管给药(图8)创伤大,难度高,腹腔注射配合衣壳优化后的血清型AAV8(Y447F+Y733F),也能取得对胰腺较高的感染效率[3]。
表3. 胰腺不同的注射方式
注射方式 |
病毒用量 |
优点 |
缺点 |
胰腺导管注射[4-7] |
1E+11 vg~4E+11 vg |
对胰腺侵染效率高,特异性好,病毒用量少 |
难度高,创伤大 |
腹腔注射[3, 5] |
1E+12 vg |
创伤小,操作简单侵染效率中等,可使用衣壳优化后的血清型增加感染效率 |
病毒用量大,侵染效率不如胰腺导管注射 |
尾静脉[2, 3] |
1E+12 vg |
创伤小,操作简单 |
侵染效率低 |
图8. 胰腺给药示意图[7]
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